中华放射医学与防护杂志  2016, Vol. 36 Issue (3): 186-190   PDF    
神经营养因子受体亚细胞定位改变参与食管癌细胞上皮间质转化及放射抗性的形成
张亚芳, 张歌, 常晓静, 周欢娣, 盖晓惠, 薛晓英     
050000 石家庄, 河北医科大学第二医院放疗科
[摘要]    目的 探讨神经营养因子受体(NRAGE)亚细胞定位改变与人食管癌细胞上皮和间质转化及放射抗性形成的关系。方法 应用转化生长因子(TGF-β1)诱导人食管癌细胞TE13,建立上皮间质转化(EMT)模型细胞。以TE13细胞、EMT模型细胞、放射抗拒TE13R120细胞为研究对象,通过Real-time PCR和Western blot检测EMT标记物mRNA和蛋白表达,验证EMT模型的建立和TE13R120存在EMT样表型。Real-time PCR比较NRAGE在3组细胞中mRNA水平的表达情况,Western blot检测3组细胞中NRAGE总蛋白及胞质、胞核蛋白的表达。结果 TGF-β1诱导TE13细胞形态向间质型细胞转化,EMT标志物E-cadherin和Vimentin表达发生改变(t=13.56、-232.84,P<0.05),成功建立EMT模型细胞。放射抗拒TE13R120细胞中EMT标记物表现出与EMT模型细胞相似的趋势(t=15.84、-54.54,P<0.05)。NRAGE在EMT模型细胞、TE13R120细胞中的表达较TE13细胞明显上调,且均在细胞核内表达明显升高(t=-8.73、-5.62, P<0.05),而在细胞质中表达差异无统计学意义。NRAGE在EMT模型细胞和TE13R120细胞胞质、胞核中的表达差异均无统计学意义。结论 放射抗拒 TE13R120细胞存在EMT样表型,且其放射抗性的形成可能因EMT的发生参与了NRAGE亚细胞定位的改变而导致。
[关键词]     食管鳞状细胞癌    放射抗性    神经营养因子受体    上皮间质转化    
Effects of subcellular localization of neurotrophin receptor p75 interacting MAGE homologue on the epithelial to mesenchymal transition and radioresistance of esophageal cancer cells
Zhang Yafang, Zhang Ge, Chang Xiaojing, Zhou Huandi, Ge Xiaohui, Xue Xiaoying     
Department of Radiation Oncology, the Second Hospital of Hebei Medical University, Shijiazhuang, 050000, China
Fund program: Natural Science Foundation of Hebei Province (C2009001151)
Corresponding author: Xue Xiaoying,Email:xxy6412@163.com
[Abstract]    Objective To investigate the role of NRAGE subcellular localization in the EMT and radioresistance of esophageal cancer cells. Methods EMT model cells were established by the treatment of TE13 cells with TGF-β1. To verify the establishment of EMT model and the phenotype of EMT-like TE13R120 cells, EMT marker mRNA and protein were detected by Real-time PCR and Western blot, respectively. Real-time PCR was also used to detect the expression of NRAGE mRNA in three groups. Total NRAGE protein, cytoplasm protein and nuclear protein were measured by Western blot. Results It was found that TGF-β1 could induce morphological alterations of TE13 cells from epithelial to mesenchymal and change the expressions of EMT maker E-cadherin and vimentin (t=13.56, -232.84, P<0.05), indicating the successful establishment of EMT model cells. Similar expression trends of EMT makers were observed in TE13R120 cells (t=15.84, -54.54, P<0.05). NRAGE mRNA (t=-8.73, -5.62, P<0.05) and total protein in both EMT model cells and TE13R120 cells were higher than that in TE13 cells, especially for the nuclear proteins. However, no differences in NRAGE cytoplasm protein expression were found among the three groups. In addition, there were also no difference of NRAGE mRNA (t=-0.88, P>0.05), cytoplasm and nuclear protein between TE13R120 cells and EMT model cells. ConclusionsThe radioresistant cell line TE13R120 has the EMT-like phenotype that may cause cell radioresistance by changing the subcelluar localization of NRAGE.
[Key words]     Esophageal squamous cell carcinoma    Radioresistance    Neurotrophin receptor p75 interacting MAGE homologue    Epithelial to mesenchymal transition    

神经营养因子受体(neurotrophin receptor p75 interacting MAGE homologue,NRAGE),又称MAGED1或Dlxin-1,属于黑色素瘤相关抗原MAGE家族Ⅱ类,最初作为一个抑癌基因在细胞存活、凋亡、细胞周期和分化中发挥重要调节功能[1]。近几年的研究发现,NRAGE在胃癌、黑色素瘤、结肠癌等癌组织中过表达,并存在与抑癌基因截然相反的作用[2, 3]。本组前期研究发现,NRAGE在食管癌放射抗拒细胞TE13R120中表达升高[4],并提示NRAGE亚细胞定位改变可能促进食管癌放射抗拒细胞TE13R120放射抗性的形成[5]

上皮间质转化(epithelial to mesenchymal transition,EMT)表现为上皮细胞失去细胞间的黏附性和极性,获得迁移特性,具有更强的侵袭和转移能力[6]。目前已有多项研究证实EMT与放疗抗性的形成相关[7]。Kumar 等[2]发现在正常乳腺上皮细胞EMT期间NRAGE的亚细胞定位发生改变。但NRAGE亚细胞定位改变与EMT及食管癌细胞放射抗性形成存在何种机制尚无报道。本研究旨在进一步探讨食管癌细胞中NRAGE亚细胞定位改变在EMT与放射抗性形成中的作用。

材料与方法

1. 细胞系与材料:人食管鳞状细胞癌细胞系TE13为北京大学高献书教授实验室惠赠,TE13R120经反复照射,累积剂量120 Gy,并验证放射抗性稳定遗传后获得[8]。两株细胞均置于含10%胎牛血清、100 U/ml青霉素、100 U/ml链霉素的RPMI 1640培养基内,在37℃、5%CO2饱和湿度的培养箱内培养。转化生长因子-β1(TGF-β1)和MAGED1多克隆抗体均购自美国Peprotech公司;E-钙黏蛋白(E-cadherin)多克隆抗体购自美国Santa Cruz公司;波形蛋白(Vimentin)多克隆抗体购自北京博奥森公司;DAB显色剂及一步法聚合物检测系统均购自北京中杉金桥公司;引物设计购自上海捷瑞公司;PrimeScriptTM Ⅱ反转录试剂盒与SYBR Premix Ex TaqTM均购自日本TaKaRa公司。光学倒置显微镜及照相系统购自日本SANYO公司,Real-time PCR仪购自安捷伦科技有限公司,全数字引导直线加速器购自瑞典医科达公司。

2. TGF-β1诱导TE13细胞发生EMT建立EMT模型细胞:TE13细胞常规消化后接种适量细胞于6孔板中,在37℃、5%CO2饱和湿度条件下培养过夜。无血清培养基饥饿培养6~8 h,加入TGF-β1(10 ng/ml)处理48 h后在相差显微镜下观察细胞形态变化并拍照。

3. Real-time PCR:取对数生长期的TE13细胞、TE13R120细胞和EMT模型细胞,利用Trizol试剂提取总RNA,NanoDrop2000测量检测RNA纯度和浓度,使A260/A280比值控制在1.8~2.0之间。Real-time PCR操作步骤按照TaKaRa说明书进行。采用GAPDH做内参对照,Real-time PCR引物序列为:GAPDH上游:5′CATGAGAAGTATGACAACAGCCT 3′,下游:5′ AGTCCTTCCACGATAC
CAAAGT 3′ ;E-cadherin 上游:5′ CAGCGTGTGTGACTGTGAAG 3′ ,下游:5′ AAACAGCAAGAGCAGCAGAA 3′ ;Vimentin上游:5′ CCTGCAGGATGAGATTCAGA 3′ ,下游:5′ GGCAGAGAAATCCTGCTCTC 3′ ;NRAGE上游:5′ TGCCAGTGAGGCTGTCCTCT 3′ ,下游:5′ CATCTGCAGCCTCCATGAACT 3′ 。

Real-time PCR反应体系为:95℃ 30 s 1个循环;95℃ 5 s,60℃ 20 s 40个循环;起始温度 60℃,目标温度 95℃。以上实验重复3次。

4.Western blot检测:细胞裂解液裂解同上3种细胞,4℃ 12 000×g离心10 min取上清,BCA蛋白定量试剂盒检测蛋白浓度,变性,-20℃储存。按每孔上样量30 μg进行SDS-PAGE电泳,90 V恒压转膜90 min,3%脱脂奶粉封闭1 h。一抗4℃孵育过夜(E-cadherin 1∶1 000,Vimentin 1∶1 000,MAGED1 1∶1 000),用TBST在脱色摇床上洗膜15 min×3次,加辣根酶羊抗鼠(1∶2 000)或羊抗兔(1∶2 000)IgG,37℃孵育1 h后,用TBST洗膜5 min×3。ECL显色试剂盒显影。以上实验重复3次。

5.统计学处理:数据以 ± s表示,采用SPSS 17.0统计软件进行分析,计量资料两组间比较采用t检验,多组间的比较采用Kruskal-Wallis秩和检验。P < 0.05为差异有统计学意义。

结果

1.TGF-β1诱导TE13细胞形态学变化观察:TE13细胞在TGF-β1处理48 h后,通过相差显微镜观察,未处理的TE13细胞呈不规则的多边形,细胞间边界不清,呈片状生长,细胞间结合紧密,表现为不规则的上皮细胞形态;经TGF-β1刺激后,大部分细胞呈纺锤形,细胞排列较乱,细胞间连接疏松,呈现明显的间质细胞形态(图 1)。

图 1 TE13细胞未处理(A)和处理后(B)的形态学变化 ×200 Figure 1 Morphology of TE13 cells before (A) and after (B) TGF-β1 treatment ×200

2.TE13细胞、EMT模型细胞、TE13R120细胞上皮及间质标记蛋白表达的情况:经过TGF-β1处理48 h后,Real-time PCR和Western blot结果显示,细胞上皮标记蛋白E-cadherin的mRNA水平和总蛋白水平均下调,间质标记蛋白Vimentin的mRNA水平和总蛋白水平均上调,且差异有统计学意义(t=13.56、-232.84,P < 0.05,表 1图 2)。表明TGF-β1诱导TE13发生EMT的细胞模型建立成功。Real-time PCR和Western blot结果显示,与亲本TE13细胞相比,TE13R120细胞中E-cadherin和Vimentin mRNA及总蛋白出现同EMT模型细胞相似的趋势,且差异具有统计学意义(t=15.84、-54.54,P < 0.05,表 1图 2)。提示食管癌放射抗性细胞TE13R120已经具有的EMT样表型。

表 1 3组细胞中E-cadherin和Vimentin mRNA水平表达 Table 1 The mRNA expression of E-cadherin and Vimentin in three groups

图 2 TE13细胞、EMT模型细胞和TE13R120细胞中E-cadherin及Vimentin 蛋白表达水平 Figure 2 The protein expressions of E-cadherin and vimentin in TE13 cells, EMT model cells and TE13R120 cells

3. NRAGE mRNA和总蛋白在TE13细胞、EMT模型细胞和TE13R120细胞中的表达:Real-time PCR结果显示,与TE13细胞相比,NRAGE在后两种细胞中mRNA水平的表达量均上调 (t=-8.73、-5.62,P < 0.05);Western blot检测结果显示,TE13R120细胞和EMT模型细胞NRAGE的总蛋白表达量较TE13细胞水平上调,见图 3。在TE13R120和EMT模型细胞中均发现NRAGE的过表达现象(t=-0.88,P>0.05),提示食管癌放射抗性细胞极可能由于EMT的发生参与了NRAGE的过表达,进而促使放射抗性产生。

注:a与TE13细胞同一基因比较,t=-8.73、-5.62,P < 0.05图 3 TE13细胞、EMT细胞模型及TE13R120细胞中NRAGE mRNA(A)和总蛋白(B)表达情况 Figure 3 Expressions of NRAGE mRNA (A)and its protein (B) in TE13 cells, EMT model cells and TE13R120 cells

4. NRAGE胞质胞核蛋白在TE13细胞、EMT模型细胞和TE13R120细胞中的表达:进一步检测其内胞质胞核表达情况,三者胞质蛋白NRAGE表达量无明显差别,而胞核蛋白NRAGE表达量TE13R120细胞和EMT模型细胞较TE13细胞明显增多,且TE13R120细胞和EMT模型细胞间没有差别(图 4)。提示,EMT的发生促使NRAGE亚细胞定位发生改变。

图 4 TE13细胞、EMT细胞模型及TE13R120细胞中胞质蛋白(A)和胞核蛋白(B)表达情况 Figure 4 Expressions of NRAGE protein in cytoplasm (A) and nuclei (B) of TE13 cells, EMT model cells and TE13R120 cells
讨论

放射抗性是肿瘤放疗失败的主要原因,同时也是食管癌放射生物学研究的焦点,对其分子机制的研究备受关注。多项研究证实肿瘤细胞受照射后可发生EMT[9],并证实EMT可促进放射抗性的形成[10]。而且在具有放射抗性的肿瘤细胞,如鼻咽癌、前列腺癌、食管癌等细胞中存在EMT样表型[11, 12]。本实验在具有放射抗性的食管癌细胞TE13R120中发现并验证了EMT样表型的存在。

在本组的前期研究中,应用基因芯片技术分析了食管鳞状细胞癌细胞TE13与其建立的放射抗性细胞TE13R120的差异表达基因,发现NRAGE在TE13R120细胞中高表达,显示NRAGE的高表达与放射抗性相关[5],但NRAGE亚细胞定位参与放射抗性的分子机制尚无文献报道。在关于NRAGE与细胞黏附、侵袭转移方面的研究中,发现多种肿瘤细胞表现出EMT样表型[13],且有研究证实,在乳腺上皮细胞EMT形成期间NRAGE的表达发生改变,即核移位[2]。就此猜测NRAGE、食管癌放射抗拒细胞、EMT三者间存在某种联系。

为研究NRAGE在EMT参与放射抗性的分子机制,本实验对3株细胞NRAGE的转录水平和翻译水平进行检测,结果显示,TGF-β1成功诱导TE13细胞发生EMT后,NRAGE在细胞核中的表达明显上调,且与同样具有EMT样表型的放射抗拒细胞TE13R120中NRAGE核表达变化相一致。可见EMT的发生可能通过参与NRAGE亚细胞定位改变,促进放射抗性的形成。但其发生的详细分子机制尚不清楚。有报道证实,过表达NRAGE可抑制上皮标记蛋白E-cadherin 和β-catenin的表达[13],E-cadherin的下调作为EMT形成过程中的标志性事件[7],可能通过NRAGE改变E-cadherin和β-catenin的表达参与EMT的形成,这种亚细胞定位的改变与EMT及放射抗性的形成是通过何种方式进行调控,仍需进一步研究。

近几年,有关NRAGE核移位的研究开始受到关注。Matsuda等[14]研究发现NRAGE可以与Ror2的C端结合,共定位于近细胞膜,而Ror2表达下调或缺失时,NRAGE基因移位入细胞核,与Msx2结合,启动其转录活性。Kumar等[2]发现锚定蛋白Ankyrin-G N端锚蛋白重复区域与E-cadherin结合,并将NRAGE定位于细胞质中,当上皮细胞发生EMT后,Ankyrin-G的表达受到抑制,可允许小部分NRAGE转移至细胞核。说明NRAGE的功能比较复杂,在细胞内有不同的定位,参与调控不同的信号通路,发挥不同的生物学功能,NRAGE的核移位可能赋予了NRAGE不同的角色。对于其亚细胞定位的改变机制,可从上述研究中寻找关键分子对NRAGE在细胞核和细胞质之间穿梭机制进一步探讨。

综上所述,本实验通过体外实验发现了NRAGE可能通过参与EMT促进放射抗性的形成的机制。本实验虽然为研究放射抗性形成发现了新的靶点,但仍有许多问题有待进一步研究,其中包括缺乏体内实验的验证;放射治疗如何提高细胞内NRAGE的表达量;NRAGE进入细胞核是否影响其他基因的转录。尽管如此,该发现在放射抗性的形成、EMT与放射抗性形成机制研究中提供了新的方向,对放射增敏药物的研发提供了新的靶点。

利益冲突   本人与本人家属、其他研究者,未因进行该研究而接受任何不正当的职务或财务利益,在此对研究的独立性和科学性予以保证

作者贡献声明   张亚芳、薛晓英设计研究方案,收集数据后统计并起草论文;张歌,协助实验部分的完成;常晓静、薛晓英指导、监督试验进行;周欢娣、薛晓英论文修改;盖晓惠负责放疗计划的设计

参考文献
[1] Yang Q, Ou C, Liu M, et al. NRAGE promotes cell proliferation by stabilizing PCNA in a ubiquitin-proteasome pathway in esophageal carcinomas[J]. Carcinogenesis,2014,35(7):1643-1651. DOI:10.1093/carcin/bgu084.
[2] Kumar S, Park SH, Cieply B, et al. A pathway for the control of anoikis sensitivity by E-cadherin and epithelial-to-mesenchymal transition[J]. Mol Cell Biol, 2011,31(19):4036-4051.DOI:10.1128/MCB.01342-10.
[3] 张占化,闫爱华,张占薪,等. NRAGE基因在胃癌组织中表达与病理特征的关系[J]. 医药论坛杂志,2007,28(19):17-18.DOI:10.3969/j.issn.1672-3422.2007.19.008. Zhang ZH, Yan AH, Zhang ZX, et al. Expression of NRAGE gene in gastric carcinoma and its regulation role in apoptosis. J Medical Forum, 2007,28(19):17-18. DOI:10.3969/j.issn.1672-3422.2007.19.008.
[4] 薛晓英,高献书,周志国,等. 食管癌细胞系TE13R120放射抗性与HDAC3、NF-kB和NRAGE关系的研究[J]. 中华放射医学与防护杂志,2005,25(1):31-34.DOI:10.3760/cma.j.issn.0254-5098.2005.01.008. Xue XY, Gao XS, Zhou ZG,et al.A study of the relationship of the radioresistance of esophageal carcinoma cell line TE13R120 with HDAC3, NF-kB and NRAGE[J]. Chin J Radiol Med Prot, 2005,25(1):31-34.DOI:10.3760/cma.j.issn.0254-5098.2005.01.008.
[5] Xue XY, Liu ZH, Jing FM, et al. Relationship between NRAGE and the radioresistance of esophageal carcinoma cell line TE13R120[J]. Chin J Cancer, 2010, 29(10):900-906. DOI:10.5732/cjc.010.10141.
[6] Thiery JP. Epithelial-mesenchymal transitions in tumour progression[J]. Nat Rev Cancer,2002,2(6):442-454. DOI:10.1038/nrc822.
[7] Marie-Egyptienne DT, Lohse I, Hill RP. Cancer stem cells, the epithelial to mesenchymal transition (EMT) and radioresistance:potential role of hypoxia[J]. Cancer Lett,2013,341(1):63-72. DOI:10.1016/j.canlet.2012.11.019.
[8] 杨延灵,薛晓英,冉玉格,等. 反复照射建立食管癌放射抗性细胞系方法的重复性和稳定性研究[J]. 河北医科大学学报,2015(3):300-303. DOI:10.3969/j.issn.1007-3205.2015.03.015. Yang YL, Xue XY, Ran YG, et al. Repeatability and stability of repeated irradiation method to establish the radioresistant esophageal cancer cell line[J]. J Hebei Med Univ, 2015(3):300-303.DOI:10.3969/j.issn.1007-3205.2015.03.015.
[9] Barcellos-Hoff MH, Derynck R, Tsang ML, et al. Transforming growth factor-beta activation in irradiated murine mammary gland[J]. J Clin Invest,1994,93(2):892-899. DOI:10.1172/JCI117045.
[10] Theys J, Jutten B, Habets R, et al. E-Cadherin loss associated with EMT promotes radioresistance in human tumor cells[J]. Radiother Oncol,2011,99(3):392-397. DOI:10.1016/j.radonc.2011.05.044.
[11] Chang L, Graham PH, Hao J, et al. Acquisition of epithelial-mesenchymal transition and cancer stem cell phenotypes is associated with activation of the PI3K/Akt/mTOR pathway in prostate cancer radioresistance[J]. Cell Death Dis,2013,4:e875. DOI:10.1038/cddis.2013.407.
[12] 李果, 刘勇, 粟忠武,等.放射线照射诱导鼻咽癌细胞上皮-间质转化的作用研究[J].中华耳鼻咽喉头颈外科杂志, 2013, 48(8):662-667. DOI:10.3760/cma.j.issn.1673-0860.2013.08.011. Li G, Liu Y, Su ZW, et al. Irradiation induced epithelial-mesenchymal transition in nasopharyngeal carcinoma in vitro[J]. Chin J Otorhinol Head Neck Surg, 2013, 48(8):662-667. DOI:10.3760/cma.j.issn.1673-0860.2013.08.011.
[13] Chu CS, Xue B, Tu C, et al. NRAGE suppresses metastasis of melanoma and pancreatic cancer in vitro and in vivo[J]. Cancer Lett, 2007,250(2):268-275. DOI:10.1016/j.canlet.2006.10.020.
[14] Matsuda T, Suzuki H, Oishi I, et al. The receptor tyrosine kinase Ror2 associates with the melanoma-associated antigen (MAGE) family protein Dlxin-1 and regulates its intracellular distribution[J]. J Biol Chem,2003,278(31):29057-29064. DOI:10.1074/jbc.M302199200.