中华放射医学与防护杂志  2015, Vol. 35 Issue (11): 809-814   PDF    
聚乙二醇和核酸适配体AS1411修饰的金纳米粒子对人宫颈癌HeLa细胞放射敏感性的影响
马洪鸽, 林温文, 史盼影, 张保国     
215123 苏州大学医学部放射医学与防护学院 江苏省高校放射医学协同创新中心
[摘要]    目的 研究聚乙二醇(PEG)和核酸适配体AS1411修饰的金纳米粒子(AuNPs)对人宫颈癌HeLa细胞辐射敏感性的影响。方法 用PEG和PEG-AS1411分别修饰经柠檬酸钠还原法制备的AuNPs,制备纳米粒子AuNPs@PEG和AuNPs@PEG-AS1411。分别用CCK-8法和克隆形成法检测纳米粒子的细胞毒性。用电感耦合等离子体质谱仪(ICP-MS)检测HeLa细胞对纳米粒子的吸收量。用克隆形成法检测纳米粒子联合X射线照射对HeLa细胞存活率的影响。结果 CCK-8实验结果显示,AuNPs@PEG和AuNPs@PEG-AS1411对HeLa细胞的毒性很小(P>0.05),而克隆形成实验结果则显示,10 d后HeLa细胞的存活率明显降低(t=4.38~11.60,P<0.05)。用AS1411修饰AuNPs,可以增加细胞对AuNPs的吸收。AuNPs@PEG和AuNPs@PEG-AS1411对HeLa细胞均具有辐射增敏作用(F=7.90、48.23,P<0.05),Au浓度为10 mg/ L时,其增敏比分别为1.12和1.20。结论 AuNPs@PEG和AuNPs@PEG-AS1411对HeLa细胞的急性细胞毒性较小,但具有长期毒性。用AS1411修饰PEG化的AuNPs,可以增强AuNPs的放射增敏作用。
[关键词]     AS1411    纳米金粒子    辐射敏感性    
Effects of AuNPs@PEG-AS1411 nanoparticles on radiosensitization of HeLa cancer cells
Ma Hongge, Lin Wenwen, Shi Panying, Zhang Baoguo     
School of Radiation Medicine and Protection, Medical College of Soochow University, Collaborative Innovation Center of Radiological Medicine of Jiangsu Higher Education Institutions, Suzhou 215123, China
[Abstract]    Objective To study the effects of AuNPs@PEG-AS1411 nanoparticles on radiosensitization of human uterine cervix cancer HeLa cells.Methods AuNPs were synthesized by citrate reduction method and then functioned with PEG and PEG-AS1411, respectively. CCK-8 assay and colon forming assay were used to detect the acute and chronic toxicity effects of AuNPs on HeLa cells, respectively. At the same time, clonogenic survival assay was applied to measure the cell survival rate of HeLa cells after exposure to AuNPs@PEG and AuNPs@PEG-AS1411 combined with X-ray radiation. The intracellular uptake of AuNPs@PEG and AuNPs@PEG-AS1411 in HeLa cells were detected by ICP-MS. Results The CCK-8 assay showed that AuNPs@PEG and AuNPs@PEG-AS1411 were not toxical on HeLa cells(P>0.05). But the clonogenic survival assay showed that AuNPs@PEG and AuNPs@PEG-AS1411 had toxicity on HeLa cells significantly after 10 d(t=4.38-11.60,P<0.05). AuNPs functioned with AS1411 could increase the cellular uptake of AuNPs. AuNPs@PEG and AuNPs@PEG-AS1411 both had significant radiosensitive effect on HeLa cells(F=7.90,48.23,P<0.05). The values of SERDo for AuNPs@PEG and AuNPs@PEG-AS1411 were 1.12 and 1.20, respectively, when the concentration of Au was 10 mg/L. Conclusions AuNPs@PEG and AuNPs@PEG-AS1411 could cause chronic toxicity on HeLa cells instead of acute effect. PEGylated AuNPs functioned with AS1411 could enhance the radiosensitivity of HeLa cells in vitro.
[Key words]     AS1411    Au nanoparticles    Radiosensitization    

放射治疗是治疗肿瘤的主要手段之一,肿瘤细胞的辐射敏感性直接影响肿瘤的放疗效果。研究提高肿瘤细胞辐射敏感性的药物,对提高肿瘤放疗的疗效具有重要意义。金纳米粒子(AuNPs)原子序数高、化学性质稳定,无明显急性生物毒性[1],且容易制备。肿瘤组织中,AuNPs的含量增加,可以增加肿瘤组织的吸收剂量,从而增强辐射损伤效应。而纳米金粒子增敏比与进入细胞的纳米金粒子的浓度相关[2]。细胞对AuNPs的吸收与其表面修饰密切相关[3]。本研究以人宫颈癌HeLa细胞为对象,分别用聚乙二醇修饰的AuNPs(AuNPs@PEG)及聚乙二醇和核酸适配体AS1411修饰的AuNPs(AuNPs@PEG-AS1411)处理HeLa细胞,研究其对HeLa细胞辐射敏感性的影响。

材料与方法

1.主要试剂和仪器:氨基-聚乙二醇-氨基(NH2-PEG-NH2)(相对分子质量2×103)、1-(3-二甲氨基丙基)-3-乙基碳二亚胺盐酸盐(EDC)、脂肪酸甲酯磺酸盐(MES)购自苏州博美达试剂仪器有限公司;柠檬酸三钠、3-巯基丙酸(MPA)、N-羟基琥珀酰亚胺(NHS)购自美国Sigma公司;氯金酸(HAuCl4)、透析膜(相对分子质量1×103)、羧基-AS1411(序列为5' COOH-TTGGTGGTGGTGGTTGTGGTGGTGGTGG 3')及对照序列cApt(序列为5' COOH-TTCCTCCTCCTCCTTCTCCTCCTCCTCC 3')购自上海生工公司;DMEM细胞培养基、小牛血清购自美国GIBCO公司;细胞增殖及细胞毒性检测试剂盒(CCK-8)购自上海同仁化学研究所;多功能酶标仪(美国Bio-Tek公司,Synergy 2)、纳米粒度分析仪(英国马尔文公司,Zetasizer Nano ZS90)、电感耦合等离子体质谱仪(ICP-MS,美国Thermo公司,ELEMENT 2)。

2.细胞培养与照射条件:人宫颈癌HeLa细胞为本实验室保存,置于含有10%的小牛血清的DMEM培养基中,在37℃、5%CO2饱和湿度条件下培养,培养瓶内单层传代培养,取对数生长期细胞进行实验。应用美国Radsource公司RS 2000 PRO型X射线生物照射仪照射细胞,射线能量160 kVp,吸收剂量率1.15 Gy/min,源靶距40 cm。

3. AuNPs的制备:将HAuCl4溶液稀释成0.01%浓度,取200 ml加热至沸腾;在搅动下加入4 ml 1%的柠檬酸三钠水溶液,继续加热煮沸15 min。冷却至室温后,4℃避光保存备用。制得的AuNPs和AuNPs@PEG的粒径分别为44和48 nm,AuNPs@PEG-AS1411和AuNPs@PEG-cApt的均为50 nm。

4. AuNPs@PEG的制备:根据参考文献[4]提供的方法制备AuNPs@PEG。用纳米粒度分析仪检测AuNPs@PEG的粒径,ICP-MS检测AuNPs@PEG溶液的浓度。

5. AuNPs@PEG-AS1411和AuNPs@PEG-cApt的制备:取7 ml 50 mmol/L MES溶液,用K2CO3溶液调其pH值为6.0左右,加入7 mg EDC和10.5 mg NHS,搅拌30 min,混合均匀。从中取出0.7 ml溶液与0.3 ml 0.1 mmol/L AS1411溶液混合均匀,搅拌30 min。然后,加入到已制得的130 ml AuNPs@PEG溶液中,搅拌24 h。后将所得液体在4℃、60 000×g离心15 min,重复离心3次,得到AuNPs@PEG-AS1411溶液。用纳米粒度分析仪检测AuNPs@PEG-AS1411的粒径,用ICP-MS检测AuNPs@PEG-AS1411溶液的浓度。用cApt取代AS1411制备AuNPs@PEG-cApt溶液。

6.细胞内AuNPs含量检测:细胞分为AuNPs@PEG组、AuNPs@PEG-AS1411组和AuNPs@PEG-cApt组3组。每组HeLa细胞制成细胞悬液,接种于6孔板。待细胞铺满孔底80%后,分别加Au浓度为10 mg/L的AuNPs@PEG、AuNPs@PEG-AS1411、AuNPs@PEG-cApt培养基,每组设3个复孔。培养24 h后,弃药物及培养基,PBS洗3次,胰酶消化,加3 ml培养基吹打为细胞悬液。计数每孔细胞的数量。离心半径15 cm,1 000 r/min离心5 min,收集细胞,用ICP-MS测量每个样本中Au的浓度。根据纳米粒子粒径,样本中细胞数目和金浓度计算出进入细胞中AuNPs数量。

7.细胞毒性实验:取对数生长期细胞,制成单细胞悬液,接种于96孔板,根据培养时间确定接种细胞数量,培养24 h组接种5 000/孔,培养48 h组接种3 000/孔,培养72 h组接种1 000/孔,每孔含100 μl细胞培养基。接种细胞分空白对照组(培养基,不含细胞)、对照组(培养基+细胞)和实验组(AuNPs@PEG、AuNPs@PEG-AS1411和AuNPs@PEG-cApt+培养基+细胞)。接种细胞24 h后,在实验组细胞中分别加入AuNPs@PEG、AuNPs@PEG-AS1411、AuNPs@PEG-cApt,使其终浓度分别为5和10 mg/L,每组设6个复孔。在37°C、5%CO2及饱和湿度条件下分别继续培养24、48 和72 h后, 取出培养板,弃培养基,每孔加入90 μl新的DMEM培养基和10 μl CCK-8溶液,放入37°C、5%CO2饱和湿度条件下继续孵育2 h。630 nm波长为参比波长,在多功能酶标仪上检测各孔450 nm波长吸光度(A)值。细胞存活率(%)=(实验组平均A值-空白对照组平均A值)/(对照组平均A值-空白对照组平均A值)×100%。

8.克隆形成法测量X射线照射后HeLa细胞的存活率:取对数生长期细胞,制成单细胞悬液,根据照射剂量接种不同的细胞数。吸收剂量为0、2、4、6和8 Gy时分别以500、500、2 000、6 000和10 000/孔密度种入直径为60 mm培养皿中,每组每个剂量点设3个平行样。细胞分AuNPs@PEG组、AuNPs@PEG-AS1411组和AuNPs@PEG-cApt组。细胞接种后培养24 h,弃培养基,各组加含金浓度分别为0、5和10 mg/L的相应修饰的AuNPs培养基,继续培养24 h,用160 kVp X射线照射各组细胞,吸收剂量分别为0、2、4、6和8 Gy。照射后继续培养6 h后,换新鲜纯培养基继续培养10 d。甲醇固定0.5 h,姬姆萨染色0.5 h,计数50个细胞以上的细胞集落。计算细胞存活分数(SF),SF=受照细胞克隆形成率/未照射细胞克隆形成率。细胞克隆形成率(%)=克隆形成数/接种细胞数×100%。根据单击多靶模型SF=1-(1-e-D/D0)N,拟合细胞存活曲线,阈剂量Dq=D0lnN。根据D0Dq值,分别计算出SERD0和SERDq

9.统计学处理:结果用 ± s表示,采用SPSS 16.0软件进行分析。组间比较采用方差分析,多重比较采用LSD-t检验。P < 0.05为差异有统计学意义。

结 果

1.3种纳米粒子的细胞毒性:表1为CCK-8法得到的AuNPs@PEG、AuNPs@PEG-AS1411和AuNPs@PEG-cApt对HeLa细胞存活率影响的实验结果。3种AuNPs对HeLa细胞的存活率没有明显的影响(P>0.05),表明AuNPs@PEG、AuNPs@PEG-AS1411和AuNPs@PEG-cApt对HeLa细胞的急性毒性很小。

表 1 3种不同浓度的纳米粒子不同培养时间HeLa细胞的存活率(%, ± s)

表2为用克隆形成法得到的AuNPs@PEG、AuNPs@PEG-AS1411和AuNPs@PEG-cApt处理细胞24 h,对HeLa细胞存活率影响的实验结果。结果显示,HeLa细胞的存活率明显降低。表明这3种纳米粒子对HeLa具有长期毒性。

表 2 不同浓度3种纳米粒子作用后10 d HeLa细胞存活率(%, ± s)

表1表2的实验结果可以看出,浓度达到10 mg/L时,AuNPs@PEG、AuNPs@PEG-AS1411、AuNPs@PEG-cApt对HeLa细胞急性毒性很小,但存在长期毒性。

2.细胞内3种AuNPs的含量:用含Au浓度为10 mg/L的AuNPs@PEG、AuNPs@PEG-AS1411、AuNPs@PEG-cApt DMEM培养基培养HeLa细胞24 h后,进入到每个细胞中的AuNPs数分别为(3.09±0.42)×103、(11.67±0.33)×103、(3.68±0.37)×103。结果显示,每个细胞中AuNPs@PEG-AS1411含量是AuNPs@PEG的3.8倍(t=27.8,P < 0.01),而每个细胞中AuNPs@PEG和AuNPs@PEG-cApt含量差异无统计学意义,表明AS1411可以促进细胞对纳米金粒子的吸收。

3.3种AuNPs对细胞辐射敏感性的影响:以表2中0 Gy细胞存活率为基准,定义其相对存活率为100%,对各组的细胞存活率进行校正,从而得到细胞存活率曲线。图1为不同浓度AuNPs@PEG预处理联合X射线照射后HeLa细胞存活率曲线。与单纯照射组(0 mg/L组)比较,不同浓度组的存活率差异有统计学意义(F=5.65、7.90,P < 0.05),表明AuNPs@PEG可以增加HeLa细胞的辐射敏感性。

注:与 0 mg/L比较,5 mg/L时各剂量点,F=5.65,P < 0.05;10 mg/L时各剂量点,F=7.90,P < 0.05 图 1 AuNPs@ PEG纳米粒子对HeLa细胞辐射敏感性的影响

图2为不同浓度AuNPs@PEG-AS1411预处理联合X射线照射后HeLa细胞存活率曲线。与单纯照射组(0 mg/L组)比较,不同浓度组的存活率曲线差异有统计学意义(F=14.97、48.23,P < 0.05),表明AuNPs@PEG-AS1411可以增加HeLa细胞的辐射敏感性。

注:与 0 mg/L比较,5 mg/L时各剂量点,F=14.97,P < 0.05;10 mg/L时各剂量点,F=48.23,P < 0.05 图 2 AuNPs@ PEG-AS1411纳米粒子对 HeLa细胞辐射敏感性的影响

图3为不同浓度AuNPs@PEG-cApt预处理联合X射线照射后对HeLa细胞存活率曲线,从图3可以看出:与单纯照射组(0 mg/L组)比较,不同浓度组的存活率曲线差异有统计学意义(F=5.24、7.51,P < 0.05),表明AuNPs@PEG-cApt可以增加HeLa细胞的辐射敏感性。

注:与 0 mg/L比较,5 mg/L时各剂量点,F=5.24,P < 0.05;10 mg/L时各剂量点,F=7.51,P < 0.05 图 3 AuNPs@ PEG-cApt纳米粒子对 HeLa辐射敏感性的影响

使用单击多靶模型拟合细胞存活曲线,得出的D0Dq值见表3。结果表明,SERD0、SERDq随着AuNPs@PEG-AS1411浓度的增加而增加,3种纳米粒子都可以增加HeLa细胞的辐射敏感性,增敏比与Au的浓度相关,但在0~10 mg/L范围内,增敏效果还不明显。AuNPs@PEG-AS1411的增敏比最大,AuNPs@PEG和AuNPs@PEG-cApt的增敏比无明显差异,表明AS1411修饰AuNPs可以增强AuNPs的辐射增敏作用。

表 3 3种纳米粒子的辐射增敏比
讨 论

已有研究表明,AuNPs有辐射增敏作用,但要求Au浓度要达到500 mg/L,才有明显的增敏作用[2, 4, 5, 6, 7, 8]。如此大量的AuNPs进入人体,存在极大的安全隐患。Cho等[9]研究证实,4.26 mg/kg PEG修饰的13 nm AuNPs在小鼠肝脏中引起明显炎症和凋亡。本研究中,浓度达到10 mg/L时细胞存活率降到约80%,表明AuNPs存在长期毒性。因此,为减少对正常组织的损伤,用AuNPs作增敏剂,需要将AuNPs靶向到肿瘤细胞。Hainfeld等[5]研究表明,AuNPs增敏比与细胞内AuNPs的浓度相关。细胞对AuNPs的吸收与纳米粒子的大小、表面修饰密切相关,增加细胞内金纳米浓度,必须对AuNPs的表面进行修饰,使其更容易进入细胞内[3,10, 11]。Chattoppadhyay等[12]发现,利用Her-2修饰AuNPs,使其靶向到肿瘤细胞和肿瘤组织,发现可以增强辐射效应。而裸AuNPs是胶体,稳定性差,并且纳米粒子进入体内,很容易被肝脏或脾脏中的巨噬细胞吞噬。为了提高AuNPs的稳定性和生物相容性,防止被肝脏或脾脏中的巨噬细胞所清除,最常用的方法用PEG修饰纳米粒子表面[13]。由于PEG的作用,AuNPs@PEG难以进入细胞内,但会吸附在细胞膜上,AuNPs进入细胞的量很少[3]。需要在PEG的末端连接上能够促进纳米粒子进入肿瘤细胞及细胞核的分子,如细胞穿膜肽、能够结合核仁素(necleolin)的适配体AS1411等,使AuNPs靶向肿瘤细胞,容易穿过细胞膜,大量沉积在细胞内[14, 15]

核仁素是正常细胞核中丰度最高的磷酸化核蛋白,约占核仁蛋白的10%[16]。核仁素具有多种生物功能,包括调控核糖体的生物合成和成熟,调控细胞分化增殖、胞质分裂、染色质复制、核仁发生,抗细胞凋亡等。正常的细胞膜上无核仁素,而对于快速生长细胞、肿瘤细胞,则在细胞质中过表达,并被转运到细胞表面[16, 17]。肿瘤细胞表面的核仁素可作为肿瘤细胞的标志物,也可作为靶向肿瘤细胞的靶点。肿瘤细胞表面的核仁素可以将其配体从细胞表面传送到细胞核中[15]。利用肿瘤细胞表面核仁素的特性,将AuNPs靶向输运到肿瘤细胞中。核酸适配体AS1411是核仁素的特异性适配体,具有体积小、化学性质稳定不易被降解、易于合成、易修饰、无免疫原性等优点[18]。因此,本研究中,选用AS1411修饰AuNPs@PEG,利用肿瘤细胞表面核仁素过表达,而正常细胞表面无核仁素的特点,使AuNPs靶向肿瘤细胞,再利用核仁素的输运特性,将AuNPs输运到肿瘤细胞内。通过制备PEG和PEG-AS1411修饰的AuNPsAuNPs@PEG和AuNPs@PEG-AS1411,研究AuNPs@PEG、AuNPs@PEG-AS1411在HeLa内的沉积,以及AuNPs@PEG、AuNPs@PEG-AS1411对HeLa细胞辐射敏感性的影响,结果表明,AS1411修饰AuNPs可以增加HeLa细胞内AuNPs数量。对于X射线,AS1411可以增强AuNPs@PEG的辐射增敏作用,增敏效果与纳米粒子浓度成正相关,其机制可能与AS411修饰的AuNPs更容易进入到肿瘤细胞有关。Au浓度达到10 mg/L时,增敏比达到1.20,增敏效果不显著。增敏比低的原因是使用的AuNPs浓度比较低,细胞内AuNPs太少。影响肿瘤细胞内AuNPs浓度的因素很复杂,如纳米粒子的粒径、表面修饰等。还需要进行进一步的研究,提高AuNPs的辐射增敏效果。

参考文献
[1] Connor EE, Mwamuka J, Gole A, et al. Gold nanoparticles are taken up by human cells but do not cause acute cytotoxicity[J]. Small, 2005,1(3):325-327.
[2] Jain S, Coulter JA, Hounsell AR, et al. Cell-specific radiosensitization by gold nanoparticles at megavoltage radiation energies[J]. Int J Radiat Oncol Biol Phys, 2011, 79(2):531-539.
[3] Oh E, Delehanty JB, Sapsford KE, et al. Cellular uptake and fate of PEGylated gold nanoparticles is dependent on both cell-penetration peptides and particle size[J]. ACS Nano, 2011,5(8):6434-6448.
[4] Zheng Y, Hunting DJ, Ayotte P, et al. Radiosensitization of DNA by gold nanoparticles irradiated with high-energy electrons[J]. Radiat Res, 2008, 169(1):19-27.
[5] Hainfeld JF, Slatkin DN, Smilowitz HM. The use of gold nanoparticles to enhance radiotherapy in mice[J]. Phys Med Biol, 2004, 49(18):N309-N315.
[6] Misawa M, Takahashi J. Generation of reactive oxygen species induced by gold nanoparticle under X-ray and UV irradiations[J]. Nanomedicine, 2011,7(5):604-614.
[7] Rahman WN, Bishara N, Ackerly T, et al. Enhancement of radiation effects by gold nanoparticles for superficial radiation therapy[J]. Nanomedicine,2009,5(2):136-142.
[8] Tao K, Zeng J, Wang X, et al. Enhancement of radiation cytotoxicity in breast cancer cells by localized attachment of gold nanoparticles[J]. Small, 2008, 4(9):1537-1543.
[9] Cho WS, Cho M, Jeong J, et al. Acute toxicity and pharmacokinetics of 13 nm-sized PEG-coated gold nanoparticles[J]. Toxicol Appl Pharm, 2009,236(1):16-24.
[10] Gu YJ,Cheng J, Lin CC, et al. Nuclear penetration of surface functionalized gold nanoparticles[J]. Toxicol Appl Pharm,2009,237(2):196-204.
[11] Cho EC, Au L, Zhang Q, et al. The effects of size, shape, and surface functional group of gold nanostructures on their adsorption and internalization by cells[J]. Small,2010,6(4):517-522.
[12] Chattopadhyay N, Cai Z, Kwon YL, et al. Molecularly targeted gold nanoparticles enhance the radiation response of breast cancer cells and tumor xenografts to X-radiation[J]. Breast Cancer Res Treat, 2013,137(1):81-91.
[13] Conde J, Ambrosone A, Sanz V, et al. Design of multifunctional gold nanoparticles for in vitro and in vivo gene silencing[J]. ACS Nano,2012,6(9):8316-8324.
[14] Hosta-Rigau L, Olmedo I, Arbiol J, et al. Multifunctionalized gold nanoparticles with peptides targeted to gastrin-raleasing peptide receptor of a tumor cell line[J]. Bioconjugate Chem,2010,21(6):1070-1078.
[15] Dam DHM, Lee JH, Sisco PN, et al. Direct observation of nanoparticle-cancer cell nucleus interactions[J]. ACS Nano,2012,6(4):3318-3326.
[16] Medina FJ, González-Camacho F, Manzano AI, et al. Nucleolin, a major conserved multifunctional nucleolar phosphoprotein of proliferating cells[J]. J Appl Biomed,2010,8(3):141-150.
[17] Berger CM, Gaume X, Bouvet P. The roles of nucleolin subcellular localization in cancer[J]. Biochimie,2015,113(1):78-85.
[18] Bates PJ, Laber DA, Miller DM, et al. Discovery and development of the G-rich oligonucleotide AS1411 as a novel treatment for cancer[J]. Exp Mol Pathol,2009,86(3):151-164.